RT-PCR實驗代測之RT-qPCR原理！

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實時RT-PCR定量測定mRNA實時RT-PCR應用于明確要求定量數據分析的分子醫學、生物工程、微生物學和診斷學定量測定mRNA所用的的方法。盡管他被描述成“黃金”標準，但他還遠遠未達到成為標準檢測的程度。由RNA模板的多變性、含量測定的設計和方案造成的很重要的問題，與不恰當的數據標準化和數據分析一樣，也是被眾人所知卻又忽視掉了。標準化的*步，我們描繪了一系列RT-qPCR草案的基本的技術步驟，要求產生的數據具有可靠性和重演性。我們更愿意強調說，無論如何，RT-qPCR數據只是關于一個細胞或組織給定轉錄物的量的快速測定的信息。任何可變的mRNA水平的生物結果分析必須包括關于調節RNA、蛋白含量和蛋白活性的附注信息。

這里描述的整個試驗，包含了zui初的含量設計到qPCR數據分析，需要大約15小時。INTRODUCTIONRT-QPCR包括三部分：

①依靠逆轉錄酶將RNA轉變成cDNA;

②用pcr擴增cDNA;

③實時監測和定量測定cDNA的量盡管已經選用為定量測定RNA的方法，

這種含量測定的安全性依然值得商榷。首要的是以下幾點：

①結果依賴于模板的量、質量和佳的方案設計;

②逆轉錄反應不是標準化的，因此，可能多變性高;

③數據分析高度主觀化，如果操作不恰當含量測定的結果就會混亂。因此，通過質量評估每一個RT-qPCR組分含量和保持數據分析的統一性來降低多變性和擴大重現性是必要的?；虮磉_測定標準化明確要求，與人類臨床診斷分析有顯而易見的關系。

因此，我們關注這個實驗的遍及整個實驗指導的質量控制。

THE ASSAYRT-PCR (qPCR)在單管PCR的擴增和測定步驟結合使用熒光指示染料。含量的測定依賴于測定增加的熒光信號，其強度與每一次PCR循環的產物量成正比。

此外，在單次反應中，用不同染料標記的探針能夠監測和定量多標記的目的基因。在一次循環中，單次PCR熒光*次超過既定的或背景熒光閾值，這個參數就稱為循環閾值(Ct)或交叉點(Cp).起始濃度越高，Ct值越小。

當維持PCR分析滴定終點敏感性和特異性時，這種熒光和擴增物的相關性使目的基因能夠在一個較大的范圍內被定量。閉管(均質)形式消除了擴增后手工操作的需要，顯著的減少了手工操作的時間和污染的風險。Current problems這種技術的廣泛應用造成大量的可定量測定數據的方法的產生，利用

①新鮮的、冷凍的或FFPE樣品;

②整體活組織檢查、顯微切割、單個細胞、組織培養細胞;

③總RNA或mRNA;

④一系列不同cDNA引發機制;

⑤不同的酶或酶切反應體系;

⑥不同效率、靈敏度和活躍的檢測

⑦多樣的檢測試劑、反應條件、熱循環儀

⑧個人的分析方式及報告方法。每一步都明顯不具有標準化的檢測，在樣品處理、對照的使用、數據處理和質量控制處理的不同使這種不標準化進一步加劇，并且與RT-qPCR的可靠性、相關性和重復性有及其密切的關系。

理想的情況是，在每一步引入不確定的實驗設計時，要通過比較所有可能的實驗方案得出。顯然這種方法的并不現實，我們提出一系列基于現在的一些想法試驗方案，每一步都包含在內。逐一討論樣品的選擇、儲存和RNA的提取已經超出了本文的范圍，我們將在別處予以介紹。本文從RNA的提取開始。我們相信這些試驗方案將為大多數研究人員所接受并且能夠產生可靠的數據。在每次試驗中，每一個推薦的特定的試驗方案的都會經過驗證，但是不同的應用可能需要許多修改以適應特定的使用者。

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